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高效色譜柱篩選

尿嘧啶和黃嘌呤，即咖啡因、可可堿和茶堿，是一組在各種生物過程和人類消費中起重要作用的有機化合物[1-3]。這些分子屬于雜環化合物，其特點是含有碳原子和氮原子的環狀結構。尿嘧啶是 RNA(核糖核酸)的基本組成部分，RNA 是形成遺傳密碼并參與蛋白質合成的基本核堿基之一。另一方面，黃嘌呤、咖啡因、可可堿和茶堿是一類結構相似但生物效應不同的生物堿[1-3]。這些黃嘌呤存在于各種植物中，是一種眾所周知的興奮劑，可以穿過血腦屏障，影響中樞神經系統。在 RP(反相色譜)[1-3]條件下(SN_802_2023)， LC(液相色譜)可分離生物堿。

超臨界流體色譜(SFC)是一種使用超臨界二氧化碳(CO2)作為流動相的基本成分的色譜技術。這種狀態的二氧化碳被稱為超臨界，它具有獨特的特性，如高擴散系數和低粘度，使其成為分離和分析化合物的絕佳溶劑。與傳統色譜方法相比，SFC 提供了許多優勢，包括更快的分析時間，更低的溶劑消耗和分離的差異選擇性。此外，與 RP-LC 相比，SFC 代表了一種正交技術，為各種分析挑戰提供了互補的分離能力。

在 SFC 中，色譜柱篩選包括測試不同的固定相，以找到最適合特定分離任務的固定相。固定相是色譜系統的重要組成部分，因為它直接影響色譜的選擇性。不同的固定相具有不同的化學功能和與分析物的相互作用，使它們或多或少地選擇特定的化合物。通過篩選和選擇合適的色譜柱，可以優化分離條件，以獲得更好的目標分析物的分辨率和靈敏度。

本文描述了使用 Sepmatix 8x SFC 儀器對尿嘧啶、咖啡因、可可堿和茶堿混合物進行平行柱篩選，隨后轉移到制備的 Sepiatec SFC-50。

1 設備

• Sepiatec SFC-50 instrument

• Sepmatix 8x SFC instrument

• PrepPure Silica, 5μm, 250 x 10mm

• PrepPure Diol, 5μm, 250 x 10mm

• PrepPure Silica, 5μm, 250 x 4.6mm

• PrepPure Diol, 5μm, 250 x 4.6mm

• PrepPure Amino, 5μm, 250 x 4.6mm

• PrepPure 2-EP, 5μm, 250 x 4.6mm

• Reprosil 4-EP, 5μm, 250 x 4.6mm (Dr. Maisch GmbH)

• PrepPure PEI, 5μm, 250 x 4.6mm

• PrepPure CBD, 5μm, 250 x 4.6mm

• Cyano, 5μm, 250 x 4.6mm, (Dr. Maisch GmbH)

  
  

2 試劑和材料

• 二氧化碳(99.9%)

• 甲醇(≥99%)

• 尿嘧啶(99% + %)

• 可可素(99%)

• 咖啡(99%以上)

• 茶堿(99%)

3 實驗

樣品制備：

在 50/2.5mL 甲醇/水混合液中，40℃ 下用超聲水浴溶解 0.05g 尿嘧啶，0.07g 咖啡因，0.055g 可可堿，0.085g 茶堿。

Sepmatix 8x SFC 篩選運行條件：

流動相：A =二氧化碳：甲醇

流速：3ml /min(每柱)

流動相條件：

0-0.5min：5% B

0.5-8.0min：5 - 50%

8.0-9.4min：50%

9.4-9.5min：50 - 5%

9.5-10min：5% B

檢測：紫外掃描波段：200nm - 600nm

篩選運行是自動開始的。使用流量控制單元將流量設置為每通道 3mL/min，并平衡色譜柱。自動進樣(V=5 μL)，開始平行篩選(運行時間=10min)。背壓調節器設置為 150bar，柱箱加熱至 32°C。

SFC-50 運行條件：

流動相：A =二氧化碳；B=甲醇

流動相條件：等度運行條件

檢測：紫外波長 270nm

SFC 柱在規定的流速下條件預熱 3 分鐘，使用定量環自動注入樣品并開始運行。背壓調節器設置為 150bar，柱箱加熱至 40°C。

3 結果與討論

用 Sepmatix 8x SFC 篩選色譜柱：

為了確定樣品的最佳分離選擇性，進行了不同色譜柱的篩選。使用 Sepmatix 8x SFC 儀器可以高效地同時篩選8個色譜柱。因此，最佳選擇性可以在很短的時間內確定。為此，使用了 8 種不同的固定相:硅膠、二醇基、氨基、氰基、2-EP、4-EP、PEI 和 CBD，圖1顯示了篩選的結果。

▲圖1：Sepmatix 8x SFC 儀器篩選結果。從左到右依次為:硅膠、氨基、氰基、二醇基；下從左至右依次為：2-EP、4-EP、PEI、CBD 柱；運行時間=10分鐘

用分辨率(R)來衡量色譜方法在色譜圖中分離和區分兩個相鄰峰的能力，它量化了分析物相互分離的程度。表 1 顯示了 4 組分分離的分辨率值。使用 Sepmatix 軟件和以下公式自動確定：

• 其中tR1 和 tR2 代表 組分 1 或組分 2 的保留時間

• W1 和W2 代表分量1或分量 2 峰高一半處的寬度

在處理復雜的混合物時，分辨率尤其重要，因為它確保每個分析物都被很好地分離，并且可以準確地識別和定量。分辨率為 1 表示峰值根本沒有被分解，基本上是合并的，而更高的分辨率值表示峰值之間的分離更好。在使用過程中，分辨率至少應達到 1.5，才能以適當的定量和鑒定分析物。

表1：SFC 不同篩選條件下的分辨率值

R 值的篩選和評價表明，硅膠、二醇基和 PEI 相對樣品的分離選擇性最好。二醇基在運行時間和分辨率方面表現出最佳性能。硅膠柱上的分離并不完全是茶堿和咖啡因的基線分離。PEI 相的運行時間相對較長，因為樣品分子的位阻較大。表 2 為洗脫順序，這是通過測定的光譜和組分的單獨進樣來確定的。與其他相相比，硅膠顯示出不同的洗脫順序。對于氰基、2-EP 和 4-EP，不能完全確定洗脫順序。

表2：SFC 不同色譜柱篩選條件下的洗脫順序

將開發方法通過 SFC-50 放大：

由于二醇基取得了最好的結果，因此選擇了 5μm, 250 x 10mm 的 PrepPure 二醇基進行 Sepiatec SFC-50 方法放大制備。由于通過堆疊注射法純化混合物的效率明顯高于多次梯度注射法，該方法是在等度運行條件下實施的，這是使用堆疊進樣的要求。在等度條件下，樣品只能在低甲醇含量下分離(見圖2，下)。在高甲醇濃度下，由于流動相的高洗脫強度，尿嘧啶、咖啡因、茶堿和茶堿是不可分離的(見圖2，上)。

▲圖2：使用 PrepPure Diol 5 μm, 250 x 10mm 色譜柱分離樣品。上:流速= 20 mL/min, 150 bar, 40℃，270nm, 33% B，進樣量= 0.09 mL，運行時間= 4 min；下:流量= 20 mL/min 150 bar 40°C, 270 nm, 12%甲醇，0.09 mL，運行時間= 5 min

改變壓力和溫度可以優化分辨率。最佳分離條件為 40℃ 和 150bar。

圖 3 為圖 2(下)實驗條件下的堆疊進樣情況，堆疊時間為 2.42min，因此每 2.42min 進樣一次。在這種情況下，由于每次額外注入節省了平衡時間，因此提高了產能。

為了更有效的多次分離，可以使用硅膠填料。使用 34% 的甲醇作為改性劑，將堆疊時間縮短至 2.15min。與二醇基相比，硅膠填料在 100bar 下表現出更好的性能。然而，在 1.5 的分辨率下，咖啡因和茶堿并不能獲得理想的基線分離。由于硅膠的極性比二元醇高，為了快速洗脫，必須增加改性劑的含量，但這也導致溶劑消耗增加。

4 結論

在本文中，使用 Sepmatix 8x SFC 進行柱篩選，并將開發結果轉移到 Sepiatec SFC-50 進行放大。在色譜參數分辨率和運行時間方面，二醇基表現出最好的效果。對于二醇基，根據篩選結果，在 Sepiatec SFC-50 儀器上采用 250 × 10 mm 柱進行等度堆疊進樣。作為比較，開發了另一種用于硅膠填料的方法，但分辨率值略差。

這種分離表明，要想在 prep-SFC 中獲得一個好的分離方法，事先通過柱篩選確定最佳選擇性是很重要的。然后，該方法可以在 prep-SFC 上簡單實現，并進行了優化。最理想的是，該方法在等度條件下應用，以最大限度地提高產量。

每次注射后的疊加紫外信號表明該方法具有良好的再現性(圖3和4，下面)。垂直線描述了收集相應分數的時間窗口。

▲圖3：堆疊進樣與二醇柱分離。流速= 20 mL/min, 150 bar, 40℃，270 nm, 12% B，進樣量= 0.12 mL；堆疊時間:2.42 min，注射次數：8次；上圖：最終色譜圖；下圖為各注射劑的紫外信號疊加圖

▲圖4：堆疊進樣與硅膠柱分離。流速= 16 mL/min, 100 bar, 40℃，270 nm, 34% B，進樣量= 0.09 mL；堆疊時間:2.15 min，注射次數：7次；上圖：最終色譜圖；下圖：分別在254 nm和270 nm處注射的疊加紫外信號

5 參考文獻

DOI: 10.1021/jf030817m

DOI: 10.1016/j.foodchem.2004.11.013

DOI: 10.1016/j.saa.2004.03.030

Laboratory Chromatography Gμide, ISBN 3-033-00339-7, by Büchi Labortechnik AG (Switzerland)